Manual de Castración en Cerdos

 

 manual de castración en cerdos 


En el presente blog se expone un resumen del manual de castración de cerdos, el cual consta de los pasos necesarios para la castración, está a la disposición para su consideración y revisión; fue escrito tomando como referencia paginas web y material PDF.

El tema es la castración quirúrgica en porcinos, un procedimiento de manejo que, en la actualidad, y en Venezuela, es una práctica tradicional cuyo objetivo principal es la prevención del olor a verraco; mismo que puede ser percibido durante la preparación o la ingestión de carne proveniente de cerdos enteros.


OBJETIVOS


Parte de los objetivos es modificar la conducta agresiva, pero la razón principal es evitar el efecto del olor macho en las carnes porcinas cuando éstas son cocinadas y consumidas. 


El olor sexual es un defecto sensorial que afecta a la carne de cerdo procedente de machos enteros. Está producido principalmente por dos compuestos: androstenona que es una hormona esteroide que se produce en las células de Leydig de los testículos que tiene olor a orina se acumula en la saliva del verraco y se libera en momentos de excitación, y el escatol que es un producto de la degradación anaeróbica intestinal del triptófano con olor fecal 

Independientemente del sexo y del efecto de la castración, la grasa superficial de los cerdos en un 90% está compuesta por: ácido palmítico, esteárico, oleico y linoleico. El tejido graso de los machos enteros posee mayor proporción de ácidos grasos insaturados, principalmente ácido linoleico, que el de los machos castrados o el de las hembras. Los cerdos castrados tienen menor capacidad para depositar proteína, pero, por el contrario, depositan mayores cantidades de tejido adiposo. De ahí que requieran un pienso menos proteico y con menor concentración de aminoácidos para mantener el máximo crecimiento.


ANATOMÍA TESTICULAR DEL CERDO


Los testículos, se encuentran en la región perineal tras la base del pene, en el interior de la bolsa escrotal que mantiene los testículos a 1.3-3 °C por debajo de la temperatura corporal mediante un mecanismo de regulación de temperatura dependiente del sistema arterial (calor) y el sistema venoso (frío); pues los testículos son productores de espermatozoides que no maduran a la temperatura corporal. 



BOLSAS TESTICULARES


 TÚNICA VAGINAL: Es el extremo inferior del proceso vaginal del peritoneo, procede del descenso del testículo fetal desde el abdomen al escroto; contrae y oblitera dejando un saco distal cerrado en el que está invaginado el testículo, formando las capas visceral y parietal.

 TÚNICA ALBUGÍNEA: Es una cubierta del testículo densa, blanca azulada, formada por haces entrelazados de fibras de colágeno.

 TÚNICA VASCULAR: Pliegue de vasos sanguíneos y tejido conjuntivo laxo que se extiende desde la cara interna de la túnica albugínea, cubriendo los tabiques y los lobulillos testiculares.




CAPAS O TÚNICAS


DARTOS:
 Túnica de musculatura lisa, que divide a la bolsa escrotal en dos cavidades, derecha e izquierda.

 TÚNICA MUSCULAR O CREMÁSTER: Su función es elevar el testículo en condiciones de frío y temor.


CONDUCTOS INTRATESTICULARES


 CONDUCTOS / TÚBULOS SEMINÍFEROS:
 Los túbulos seminíferos se encuentran en lóbulos en el interior de los testículos y producen espermios tapizados por un epitelio seminífero o espermático y células de Sertoli, que tienen la función de nutrir a los espermios.

 CONDUCTOS / TÚBULOS RECTOS: Son lisos y sin pliegues que atraviesan el espacio que dejan libre los septos de la túnica albugínea. Su función es conducir espermatozoides.

RED DE HALLER / RED TESTICULAR: Red de conductos anastomosados localizada en el mediastino testicular rodeada por tejido conjuntivo vascularizado.


CONDUCTOS EXTRATESTICULARES


EPIDÍDIMO:
 Cuerpo alargado, adosado al borde posterosuperior del testículo de 5 cm de longitud, sus funciones son el transporte, maduración y almacenamiento de espermatozoides. Se compone por:

Cabeza: Parte anterior lisa y redondeada, descansa sobre el polo superior del testículo, unida por los conductos seminíferos.
Cuerpo: Aplanado de arriba hacia abajo, presenta dos caras y dos bordes.
Cola: Descansa sobre el polo inferior del testículo al que se encuentra unido.

CONDUCTOS DEFERENTES: Comienza en el extremo inferior del epidídimo y asciende por un lado de los testículos para formando el cordón espermático. Lleva los espermatozoides ya maduros y almacenados en el epidídimo hasta otro conducto donde se mezclarán con otros líquidos y saldrán al exterior.


VASCULARIZACIÓN TESTICULAR


ARTERIA ESPERMÁTICA:
 Rama de la aorta abdominal.

ARTERIA DEFERENCIAL: Rama de la arteria vesiculodeferencial e hipogástrica.

ARTERIA FUNICULAR: Rama de la arteria epigástrica y de la iliaca externa.

PLEXO ESPERMÁTICO 7/ PAMPINIFORME: Se origina en el plexo peri aórtica y sigue la arteria espermática hasta su terminación.

a) Plexo venoso espermático anterior: está en la celda anterior del cordón espermático; todos estos se van a unir y van a formar la vena espermática.
b) Plexo venoso espermático posterior: está en la celda posterior del cordón espermático, este termina en la vena iliaca externa
c) Plexo diferencial: Originado en el ganglio hipogástrico cuyas ramas siguen al conducto deferente desde la vesícula seminal hasta la cola del epidídimo.

 VENAS: Están encargadas del drenaje sanguíneo, al obstruirse producen el varicocele.

 VASOS LINFÁTICOS: El testículo va a drenar linfáticamente a los grupos pre-aórticos y a los latero-aórticos; los vasos linfáticos acompañan a las arterias espermáticas.


MATERIALES Y MÉTODOS


VESTIMENTA Y EQUIPO PERSONAL DE PROTECCIÓN


En todas las disciplinas profesionales o laborales es necesaria la utilización de vestimenta adecuada y de protección personal. Dicha indumentaria será útil para proteger, facilitar la labor y no limitar al portador. En el caso de los técnicos castradores harán uso de la siguiente vestimenta y equipo de protección:


1) Overol.

2) Botas de hule.
3) Gorra para protección del sol.
4) Guantes antiderrapantes para el sujetador.
5) Guantes de látex para el castrador.


EQUIPO

1) Mesas multiusos.
2) Charolas de acero inoxidable.
3) Cubeta de acero inoxidable.
4) Jarra.
5) Atomizadores.
6) Depósitos (para el material y para la basura).
7) Soga.
8) Guantes antiderrapantes.
9)Mesa quirúrgica o para procedimientos.
10) Instrumental quirúrgico:
a) Hemasculador.
b) Mango de bisturí.
c) Pinzas hemostáticas.
d) Pinzas de disección sin dientes.
e) Tijeras mayo rectas punta roma.
f)Portagujas. 


MATERIAL

1) Hojas de bisturí.
2) Jeringas.
3) Guantes de látex o nitrilo.
4) Gasas.
5) Torundas de algodón.
6)Suturas absorbibles
7) Alcohol.
8) Jabón antibacterial líquido.
9) Servilletas desechables.
10) Lidocaína.
11) Xilacina.
12) Penicilina G Procaína.
13)Vitamina K 


TÉCNICA QUIRÚRGICA ABIERTA DE CAMPO DE CASTRACIÓN DE CERDOS APOYADA EN PROCEDIMIENTOS DE QUIRÓFANO.


A) TÉCNICAS DE SUJECIÓN DEL CERDO 

Los cerdos deben ser tratados y sujetados de un modo distinto, de acuerdo a su disposición, temperamento, instintos y diseño corporal. Es más fácil trabajar con ellos, crecen mejor y por lo general son más sanos si se los trata con suavidad y se les brinda atención regularmente, sin embargo, los machos adultos siempre deben considerarse peligrosos.


SUJECIÓN MANUAL O FÍSICA PARA CASTRACIÓN DE CERDOS PEQUEÑOS

1. DECÚBITO LATERAL:

 Sosteniendo las cuatro extremidades introduciendo el dedo índice por en medio y apoyar con el pulgar y medio, las posteriores con la mano derecha y las anteriores con la izquierda.

 Apoyar el antebrazo en el cuello del animal (Usar guantes antiderrapantes ya que los cerdos mueven mucho las extremidades y les es fácil zafarse).


2.DECÚBITO DORSAL:

 La sujeción es igual a la de decúbito lateral, pero colocando el dorso del animal sobre la mesa y sin apoyarle el antebrazo en el cuello, exponiendo los testículos hacia arriba.


B) TÉCNICAS DE ASEPSIA Y ANTISEPSIA

Algunos de los antisépticos utilizados para la castración de cerdos son:

Yodopovidona (7,5% - 8%). Compuesto de yodo soluble en agua que permite una liberación gradual. Efecto residual de 4 horas y se inactiva en presencia de materia orgánica.


Clorhexidina (2% - 4%). Reduce la flora microbiana a los 15. Efecto residual de 6 horas, no se inactiva en presencia de materia orgánica. Tóxico para oídos y ojos.

 Alcohol (70%). Compuesto de efecto rápido y casi sin efectos adversos.


C) TÉCNICA QUIRÚRGICA


La técnica quirúrgica es una combinación de las técnicas tradicionales de campo y las técnicas utilizadas en quirófano con pequeñas especies y equinos, de manera que se profundiza en áreas de asepsia, antisepsia, hemostasia y antibioterapia para evitar al máximo las complicaciones.


1) Limpieza.

Se humedece la zona quirúrgica con agua y se aplica jabón antibacterial desengrasante para eliminar el exceso de suciedad.
El lavado debe ser generoso utilizando las yemas de los dedos en círculos y de arriba hacia abajo suavemente. Si el animal está muy sucio deberán usarse las uñas para eliminar el exceso de suciedad evitando irritar la piel del escroto. Se elimina la jabonadura con agua.


2) Desinfección (técnica de antisepsia).

La desinfección o lavado quirúrgico se realiza utilizando gasas embebidas en yodopovidona espuma haciendo un suave movimiento circular empezando por el centro y terminando en la zona glútea. Posteriormente se aplica solución de clorhexidina con alcohol en una proporción de 50% y 50% respectivamente en atomizador dejándolo unos segundos para neutralizar la jabonadura.


Limpiar los residuos de yodopovidona espuma y la solución de clorhexidina-alcohol con gasas secas en un movimiento de delante hacia atrás de una sola intención sin volver a pasar la gasa por la zona ya seca.


3) Uso de guantes de látex.

El uso de guantes es imprescindible en la limpieza, así como en la desinfección, tanto para realizar una técnica de antisepsia adecuada en el cerdo como para protección del castrador, y éstos se deberán cambiar inmediatamente después de realizar la desinfección y empezar el procedimiento quirúrgico.


4) Bisturí y su montaje.

Se pueden utilizar mangos de bisturí número 3 con la hoja número 10 o el mango número 4 con las hojas número 20, 21 o 22 para cortes largos superficiales. 


5) Procedimiento quirúrgico.

La incisión deberá ser paralela a la línea alba a una distancia de 1 cm de ésta, en cerdos pequeños y de 1.5 a 2 cm en cerdos más grandes. 


Sujetar el testículo con los dedos índice y pulgar por ambos lados y con el dedo medial por la parte ventral.


Las incisiones se deberán realizar hacia la parte ventral del escroto para facilitar el drenaje, ser simétricas, lo suficientemente grandes para evitar una rápida cicatrización que pueda traer consecuencias de complicaciones.


La incisión deberá ser de una sola intención, incidiendo sólo el escroto para exteriorizar el testículo envuelto en la túnica vaginal. Después se incide la túnica vaginal sutilmente evitando lacerar el testículo, y permitiendo exteriorizarlo.


Localizar el conducto espermático en la zona medial, separarlo del paquete vascular utilizando tijeras mayo rectas punta roma y cortarlo por separado para evitar una posible complicación de cirrosis del cordón.


Separar el paquete vascular de la túnica vaginal seccionando el plexo pampiniforme con tijeras mayo rectas punta roma cerrada y cortar la túnica vaginal próxima al testículo.


Una vez seccionada la túnica vaginal, extraer el testículo y exponer el paquete vascular para su hemasculado.


Hemascular por un minuto. Sujetar el muñón con pinza de disección sin dientes para verificar que no haya hemorragia.


Una vez verificado que no haya hemorragia soltar el muñón y continuar con el otro testículo. Si se presenta hemorragia se debe aplicar hemostasia de compresión con una gasa seca doblada, presionando con el dedo índice. Si no es suficiente se puede sujetar con pinzas hemostáticas de mosquito, una la colocamos en el muñón y la otra por debajo de ella a unos 3cm de separado y hacer torsión. Si continúa la hemorragia es recomendable realizar una ligadura circular de transfixión con material de ácido poliglicólico o glicólico del 2-0.


Aplicación de cicatrizante a base de aluminio micronizado, violeta de genciana o furazolidona. El aluminio micronizado es un coadyuvante en el proceso de cicatrización de heridas externas, además de poseer propiedades astringentes y actividades antimicrobiana. 

ALTERNATIVAS A LA CASTRACIÓN QUIRÚRGICA

1. Cría de machos enteros

La cría de machos enteros (no castrados) es característica del Reino Unido e Irlanda, países en los que los cerdos se sacrifican normalmente antes de que lleguen a la pubertad, con un peso canal de unos 75 Kg. Una alternativa de futuro sería la selección genética de animales con bajo olor sexual.

2. Inmunocastración

Con la inmunocastración (mediante la inyección de una vacuna antes del sacrificio), el cerdo es inmunizado contra la hormona liberadora de gonadotropina (GnRH). Dicha inmunización resulta en la inhibición de la síntesis de LH, lo que a su vez inhibe la secreción de la testosterona y la función y desarrollo testiculares.

3. Castración química

Consiste en la inyección de productos químicos (tales como el ácido láctico o la sal de cinc) en los testículos, produciendo una destrucción local del tejido testicular. En términos de bienestar, es difícil extraer conclusiones definitivas ya que faltan estudios para confirmar hasta qué punto se trata de una práctica dolorosa.

4. Cría de hembras: selección espermática.

Consiste en inseminar a las cerdas con semen sexado para que sólo produzcan descendencia femenina. Podría ser una posible alternativa a largo plazo, ya que la selección espermática todavía no está lista para ser viable en la práctica.


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